| |
| Хламідіозу - СУЧАСНІ ПІДХОДИ до діагностики та лікування |
| Цітоскопіческіе методи виявлення хламідій |
| При цітоскопіческом методі одночасно з пошуком |
| цитоплазматичних клітин-включень Провачека враховується |
| кількість лейкоцитів як показника запалення, а також |
| додаткова інформація про наявність супутньої |
| бактеріальної мікрофлори, дріжджоподібних грибів, трихомонад |
| і т.п. |
| Показання: Гостра фаза захворювання. |
| Матеріалом для дослідження служать зіскрібки з уретри у |
| чоловіків і уретри і/або цервікального каналу у жінок. |
| Матеріал беруть спеціальними щіточками або ложечками |
| Фолькмана. Виділення з цервікального каналу видаляються |
| ватним тампоном. Щіточка вводиться в канал на 1-2 см, |
| обертається 15 секунд. Соскобний матеріал розподіляється на |
| предметному склі, висушується на повітрі і фіксується в |
| метанолі або холодному ацетоні. Найбільш популярна забарвлення |
| за Романовскому-Гимзе. Після забарвлення препарати |
| проглядаються в світловому мікроскопі, використовуючи |
| иммерсионное об'єктив (х90). При цьому цитоплазма клітин |
| забарвлюється в блакитний колір, ядра в фіолетово-синій, |
| цитоплазматичні включення визначаються у вигляді |
| темно-синіх або рожевих мікроколоній на тлі блакитний |
| цитоплазми. На стадії елементарних включення хламідій |
| фарбуються у рожевий колір, на стадії елементарних тілець |
|-в синій. |
| Цітоскопіческій метод широко доступний, але ефективний лише |
| при гострих формах інфекції, значно менш ефективний і |
| інформативний при хронічних формах захворювання При |
| урогенітальному хламідіозі частота виявлення тілець |
| Провачека в зіскрібків уретри і цервікального каналу не |
| перевищує 10-12%. Наявність цих тілець підтверджує діагноз |
| хламідіозу, проте їх відсутність не виключає наявність |
| інфекції. |
| |
| |
| Пряма імунофлюоресценція (ПІФ) |
| Цей метод передбачає пряме виявлення антигенів |
| хламідій. При люмінесцентної мікроскопії включення хламідій |
| визначаються у вигляді зеленої або жовто-зеленої флуоресценції |
| включень на коричнево-помаранчевому тлі цитоплазми клітин |
| Включення можуть мати зернисту гомогенну або змішану |
| структуру. |
| Показаннями для діагностики хламідійної інфекції цим |
| методом є: |
| 1.Острая фаза захворювання. |
| 2.Хроніческая фаза захворювання |
| 3 Встановлення етіології хронічного інфекційного |
| процесу урогенітального тракту |
| 4. Вагітність з обтяженим акушерським анамнезом |
| 5. Безпліддя неясного генезу. |
| Діагностична інформативність ПІФ пов'язана з тим, що з її |
| допомогою виявляються не тільки корпускулярні, а й |
| розчинні антигени хламідій Цей метод не залежить від |
| можливої зміни тинкторіальних властивостей мікроорганізму |
| у процесі захворювання та лікування. ПІФ-метод є |
| найважливішим скринінгове методом діагностики урогенітального |
| хламідіозу. Його чутливість і специфічність при |
| використанні моноклональних антитіл становить |
| відповідно 65-90% і 85-90%. При оцінці результатів |
| слід враховувати, що тільки показники внутрішньоклітинної |
| флуоресценції можуть оцінюватися як позитивний |
| результату цього тесту при використанні поліклональних |
| антихламідійний антитіл, при використанні моноклональних - |
| результат вважають за наявності 10 ЕТ в полі зору. |
| Соскобние препарати готують також, як і для |
| цітоскопіческіх досліджень. |
| Випускають діагностичні набори, які містять моноклональні |
| антитіла для ПІФ, наступні фірми: Syva, Drfco, Kallastad, |
| Bartrels, Boots celltech, California Integrated |
| Diagnostics, Orion Diagnostica. Реагенти фірм Syva, Difco, |
| Kallastad представляють собою мічені Фітц моноклональні |
| антитіла до основного білка зовнішньої мембрани хламідій, а |
| реагенти інших фірм - моноклональні антитіла до |
| родоспеціфіческому хламідійної ліполісахаріду (ЛПС). В |
| Росії ЗАТ "Ниармедик плюс" при НІІЕМ ім. Н.Ф. Гамалії РАМН |
| випускає моноклональні антитіла до ЛПС хламідій, які |
| успішно конкурують з продукцією іноземних фірм по |
| якості продукції. Це набір "Хламоноскрін" для |
| визначення моноклональних антитіл до родоспеціфіческому |
| ліпополісахарідному антигену і набір "Хламоноскрін-2" для |
| визначення моноклональних антитіл до видоспецифічні |
| білкового антигену хламідій трахоматіс. Набори мають ФС |
| 42-359598 і реєстраційне посвідчення МОЗ Росії |
| 93/270/9. |
| Моноклональні антитіла відрізняються один від одного по |
| викликається яскравості світіння, постійності виявляються форм ЕТ |
| і ступеня специфічності. Для діагностики хламідій цим |
| методом необхідний люмінесцентний мікроскоп. |
| У цілому, метод ПІФ відповідає критеріям високої |
| чутливості і специфічності, але вимагає виконання |
| досвідченим, компетентним лабораторним працівником. |
| Висококваліфікована експертна оцінка методом ПІФ рідко |
| буває доступною, тому середня чутливість його |
| знижується. Метод недостатньо чутливий і для |
| стабільного визначення малих кількостей ЕТ. До того ж |
| неможливо перевірити і негативні результати, і, |
| отже, виявити серед них хибнонегативні, що |
| призводить до зниження чутливості. |
| |
| |
| Імуноморфологічні методи |
| Ці методи засновані на виявленні антигенних субстанцій |
| хламідій в епітелії та інших тканинах шляхом обробки |
| препаратів специфічними антитілами. Антитіла |
| діагностичної антихламідійний сироватки з'єднані з |
| будь-якої міткою - люмінесцирує (Фітц-антитіла) або |
| ферментної (ензим-мічені антитіла). |
| |
| |
| Непрямий метод іммунофлюресценцііі |
| Непрямий метод іммунофлюресценціі застосовують у тих випадках, |
| коли немає в наявності Фітц-кон'югату антихламідійний антитіл. |
| У цих випадках приготований тим же методом, що і для ПІФ |
| препарат з клінічних проб обробляють спочатку |
| антихламідійний антитілами, отриманими шляхом імунізації |
| хламідіями овець, кролів, мишей або інших тварин, а |
| потім другий сироваткою, специфічною для виду тварини, |
| яке було імунізовані хламідіями. Антитіла другу |
| сироватки кон'югованих з Фітц. Показання до застосування та |
| специфічність даного методу збігаються з ПІФ. |
| |
| |
| Діагностика хламідій на культурі клітин МсСоу |
| Одним з кращих, але в той же час найбільш трудомістким |
| є метод діагностики хламідій шляхом ізоляції |
| збудника на культурі клітин, оброблених різними |
| антиметаболітів ( "золотий стандарт") Для цієї мети звичайно |
| використовують чутливу культуру клітин, оброблену |
| ціклогексімідом. Чутливість культурального методу за |
| порівнянні з ПЛР становить 70-80%, але в той же час він |
| перевершує молекулярно-біологічні методи діагностики по |
| специфічності. У літературі описані випадки виявлення |
| хламідій трахоматіс методом ПЛР при негативних |
| результати культурального тесту і навпаки. |
| Показаннями для діагностики хламідійної інфекції цим |
| методом є: |
| 1 Вагітність з обтяженим акушерським анамнезом. |
| 2. Оцінка ефективності проведеного антибактеріального |
| лікування. |
| 3. Виявлення чутливості та резистентності до |
| антибактеріальним |
| препаратів. |
| 4. Виявлення хламідій у ВІЛ-інфікованих або осіб з |
| вторинними імунодефіцитними станами (онкологічні |
| хворі після проведених курсів променевої та хіміотерапії, |
| трансплантації кісткового мозку; особи, які отримують |
| імунодепресанти; хворі на вірусний гепатит та |
| туберкульоз). |
| 5. Безпліддя неясного генезу. |
| 6. Встановлення етіології хронічного інфекційного |
| процесу урогенітального тракту. |
| Культуральні посів є референс-методом при оцінці |
| ефективності антибактеріальної лікування. При дослідженні |
| біопроб методом ПЛР після курсу хіміотерапії в деяких |
| випадках можна отримати "хибнопозитивні з клінічною |
| точки зору "результати. Це пов'язано з тим, що неможливо |
| однозначно оцінити життєздатність і патогенність |
| мікробної клітини на підставі виявлення фрагменту її |
| геному, використовуючи лише дані молекулярно-біологічних |
| методів. У цьому випадку при дослідженні клінічного |
| матеріалу за допомогою культурального посіву мікробні клітини, |
| втратили ці важливі з клінічної точки зору властивості, |
| не дадуть зростання в клітинній культурі. |
| Для транспортування і зберігання клінічного матеріалу |
| використовують спеціальну живильне середовище (транспортна |
| середу). Вона розливається в пеніциліновий флакони по 1 мл і |
| зберігається при температурі + 4 ° С (в загальній камері побутового |
| холодильника) протягом 2-х місяців. Склад транспортної |
| середовища: середа MEM з додаванням 10% сироватки великої |
| рогатої худоби і антибіотика гентаміцину концентрації 50 |
| мкг/мл. |
| Клінічний матеріал після перенесення в транспортну середу |
| зберігається в загальній камері холодильника при температурі + 4 ° |
| З і, протягом двох діб повинен бути доставлений в |
| лабораторію. |
| Процедура посіву |
| 1. Обробка одноденною клітинної культури МсСоу 1% |
| розчином ДЕАЕ декстрану протягом 30 хвилин. |
| 2. Зараження оброблених клітин матеріалом, отриманим від |
| хворих. |
| 3. Центрифугування заражених клітин при 2500 g протягом |
| 45 хвилин. |
| 4. Відмивання клітин живильним середовищем. |
| 5. Додавання до клітин ростової середовища, що містить |
| ціклогексімід. |
| 6. Інкубації клітин протягом двох діб при 36 ° С. |
| 7. Виявлення хламідій в клітинах методом прямої |
| иммунофлюоресценции або ПЛР. |
| Реальний термін отримання результатів цим методом - сім |
| днів. |
| |
| В даний час в літературі зростає кількість повідомлень про |
| випадках резистентності хламідій до антибактеріальних |
| препаратів (еритроміцину, тетрацикліну, доксициклину, |
| фторхінолонів). Цінність культурального методу полягає в |
| те, що він є поки єдиним методом, який дозволяє |
| вибрати антибактеріальний препарат для лікування хламідійної |
| інфекції та оцінити ефективність антибактеріальної терапії. |
| |
| Схема методу виявлення стійкості хламідій трахоматіс к |
| антибактеріальних препаратів |
|-Хламідійним ізолятів, виділених від хворого при посіві, |
| заражають чутливі клітини. |
|-К заражених клітин додають ростові середу, що містить |
| антибіотик. |
|-Заражені клітини інкубують 5 днів при температурі + 36 ° |
| С. |
|-Хламідій Чутливість до антибіотика визначається за |
| придушення інфекції в заражених клітинах. Процедура |
| тривала, займає за часом два тижні. |
| |
| |
| Діагностика Chlamydia trachomatis методом полімеразної |
| ланцюгової реакції |
| Дорожнеча, тривалість і трудомісткість |
| мікробіологічного виділення хламідій у культурі |
| істотно ускладнює використання цієї процедури в |
| рутинної лабораторній діагностиці. В літературі накопичений |
| великий клініко-лабораторний досвід з використання методу |
| ПЛР для виявлення хламідій трахоматіс. Особлива увага при |
| його використанні слід приділяти, без сумніву, питань |
| правильної інтерпретації отриманих результатів. |
| Екстремально високі показники чутливості і |
| специфічності ПЛР роблять цю методику в чому |
| революційної в лабораторній діагностиці. Основними |
| мішенями при виявленні хламідій трахоматіс є |
| нуклеотидних послідовність видоспецифічні |
| кріптіческой плазміди, послідовність головного білка |
| внутрішньої мембрани, рибосомальні гени. |
| Ця реакція є багато разів повторюються |
| цикли синтезу (ампліфікації) специфічної області |
| ДНК-мішені у присутності термостабільної ДНК-полімерази, |
| дезоксінуклеотідтріфосфатов, відповідного сольового |
| буфера і олігонуклеотидних затравок-праймерів, що визначають |
| кордону ампліфіціруемого ділянки. Кожен цикл складається з |
| трьох стадій з різними температурними режимами. На першому |
| стадії при 94 ° С відбувається розділення ланцюгів ДНК, потім |
| при 56-58 ° С - приєднання (отжиг) праймерів к |
| комплементарним послідовностей на ДНК-мішені, і при |
| температурі 72 ° С протікає синтез нових ланцюгів ДНК шляхом |
| добудовування ланцюгів праймерів в напрямку 5 '-3'. В |
| кожному циклі відбувається подвоєння числа копій |
| ампліфіціруемого ділянки, що дозволяє за 25-40 циклів |
| напрацювати фрагмент ДНК, обмежений парою обраних |
| праймерів, в кількості, достатній для її детекції з |
| допомогою електрофорезу або альтернативними йому технологіями |
| В порівнянні з широко застосовуються імунологічними |
| тестами ПЛР-діагностика має низку переваг: |
|-високою і регульованою специфічністю, обумовленої лише |
| нуклеотидної послідовністю, яка застосовується в даній |
| діагностичній системі; |
|-високою чутливістю, що дозволяє діагносціровать не |
| тільки гострі, але й латентні інфекції (можливе виявлення |
| навіть поодиноких бактерій або вірусів); |
|-хімічна схожість всіх нуклеїнових кислот дозволяє |
| розробляти універсальні процедури для виявлення |
| різних інфекційних агентів, |
|-можливістю ідентифікації збудника протягом 4,5-5 |
| годин. |
| |
| Доставка біоматеріалу в ПЛР-лабораторію проводиться в |
| холодового термоконтейнери або термосі з льодом. Важливою |
| відмінною рисою ПЛР-діагностики є |
| відносно низька вартість обладнання для проведення |
| аналізу, що поєднується з універсальністю методу, що |
| дозволяє виявляти весь спектр клінічно актуальних |
| інфекційних агентів. |
| |
| ПЛР-лабораторія повинна бути розділена на зони (кімнати). |
| Слід мати не менше двох кімнат |
|-пре-ПЛР-приміщення, де проводиться обробка клінічних |
| зразків, виділення ДНК, приготування реакційної суміші |
| для ПЛР і постановка ПЛР (при наявності умов два останніх |
| етапу рекомендується також проводити в додатковому |
| окремому приміщенні), у цих приміщеннях забороняється |
| проводити всі інші види робіт з інфекційними агентами |
| (мікробіологічний аналіз, ІФА, інші діагностичні |
| тести), ПЛР-діагностика яких проводиться в даній |
| лабораторії. |
|-пост-ПЛР-приміщення, де проводиться детекция продуктів |
| ампліфікації, в ПЛР-приміщенні допускається використовувати |
| інші методи детекції інфекцій, діагностика яких |
| проводиться в даній лабораторії. Кімнату детекції продуктів |
| ампліфікації (пост-ПЛР-приміщення) слід розташовувати як |
| якнайдалі від пре-ПЛР-приміщень. Слід виключити |
| рух повітряного потоку з пост-ПЛР-приміщення в |
| пре-ПЛР-приміщення. |
| У кімнаті приготування реакційної суміші та в кімнаті |
| обробки клінічних зразків повинні бути встановлені |
| ультрафіолетові лампи, робочі поверхні в лабораторії |
| повинні оброблятися дезінфікуючими розчинами. |
| Показання для діагностики С. trachomatis методом ПЛР |
| 1. Гостра фаза захворювання |
| 2. Хронічна фаза захворювання |
| 3. Встановлення етіології хронічного інфекційного |
| процесу урогенітального тракту. |
| 4. Вагітність з обтяженим акушерським анамнезом. 5 |
| Безпліддя неясного генезу. |
| 6. Контроль ефективності проведеного антибактеріального |
| лікування. |
| У разі виявлення фрагмента ДНК хламідії трахоматіс після |
| курсу хіміотерапії слід провести культуральну |
| діагностику для виключення "хибнопозитивні с |
| клінічної точки зору результату ". Якщо проведення |
| культуральній діагностики неможливо, то необхідно через |
| 5-6 тижнів (повне оновлення епітеліального покриву |
| сечостатевих шляхів) провести повторне дослідження методом |
| ПЛР. |
| 7. Виявлення хламідії у ВІЛ-інфікованих осіб, хворих |
| туберкульозом, вірусним гепатитом і з вторинними |
| імунодефіцитними стані (онкологічні хворі після |
| курсів хіміо-і променевої терапії, трансплантації кісткового |
| мозку, які отримують імуносупресивну терапію). |
| У 1991 році компанія Хоффман-ла Рош ЛТД отримала від |
| компанії Cetus права і патенти на використання ПЛР. У цьому |
| ж році було створено Roche Molecular Systems, що займається |
| виключно питаннями розвитку та вдосконалення ПЛР. В |
| 1992 році були впроваджені перші стандартизовані |
| тест-системи для клінічної ПЛР-діагностики AMPLICOR |
| Chlamydia trachomatis, а в 1993 році розпочато виробництво |
| цих тест систем. Численний?? ті проведені дослідження |
| показали високу чутливість і специфічність даного |
| набору. Це дозволило отримати даної тест-системи |
| сертифікат Food and Drug Administration (FDA) в 1993 році. |
| У 1995 році з'явився новий набір AMPLICOR Chlamydia |
| trachomatis/Neisseria gonorrhoeae для одночасної їх |
| детекції в одній пробірці. У тесті використані |
| біотінілірованние праймери (СР24/СР27) з кріптіческой |
| плазміди С. trachomatis. Чутливість тесту становить |
| 10 копій/мл, специфічність 99,6%. Тест-система включає: |
| набір для збору та транспортування зразків, набір для |
| виділення ДНК із цервікальних, уретральних зразків і сечі, |
| набір для ампліфікації і детекції. Всі набори |
| стандартизовані, повністю готові до використання, мають |
| внутрішній контроль, систему захисту від контамінації. |
| Науково-виробничою фірмою "Літех" при НДІ |
| фізико-хімічної медицини МОЗ РФ випускається набір |
| реагентів "Полімік" у вигляді трьох окремих наборів для |
| визначення відповідно Chlamydia trachomatis, |
| Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealiticum. Кожен режим |
| "Полімік" комплектується окремим набором для виділення ДНК |
| з біопроб. Інструкція по застосуванню набору реагентів |
| рекомендована до затвердження експертною комісією Комітету |
| за нової медичної техніки МОЗ РФ (протокол No 3 від |
| 18.03.96 р.) і затверджена Міністерством охорони здоров'я РФ |
| 17.05.96 р. (ТУ 9398-405-17253567-96). |
| До складу реакційної суміші набору "Полімік" входить |
| внутрішній контроль (рекомбінантний плазміда, що містить |
| фрагмент-вставку розміром 308 н.п.). Цей компонент |
| дозволяє контролювати процес проходження реакції |
| ампліфікації, а також тестувати наявність у пробах речовин, |
| інгібують ПЛР. Смуга, що відповідає внутрішньому |
| контролю, повинна виявлятися як в позитивному, так і в |
| негативного контролю, так і в усіх тестованих пробах. |
| При виділення ДНК із біопробах ( "Набір для виділення ДНК") |
| використовується метод екстракції ДНК з клітин хламідій з |
| допомогою гуанідинів тіоціанат та скріплення вивільняються |
| нуклеїнових кислот з частками великопористі скла. Це |
| дозволяє оптимізувати умови виділення і підготовки |
| проб для ампліфікації, а також зменшити кількість |
| маніпуляцій зі зразком. При цьому всі маніпуляції проводяться |
| в одній пробірці. Вихід хромосомної ДНК становить 70-80% |
| за результатами визначення числа колонієутворюючих одиниць |
| клітин Acholeplasma laidlawii (штам мікоплазм, узятий в |
| як стандарт) як у випадку чистої культури, так і при |
| додаванні цих клітин до клінічного матеріалу, не |
| містить визначених інфекційних агентів. |
| Після завершення ПЛР продукти ампліфікації фракціоніруют |
| методом електрофорезу в 1,5% агарозном гелі. |
| Аналіз результатів діагностики |
| 1. У позитивному контрольному зразку для хламідій |
| виявляється смуга розміром 501 н.п. |
| 2. У негативному контрольному зразку смуга, |
| відповідна фрагментів геному хламідій, повинна |
| відсутніми. Поява смуги в негативному контролі |
| свідчить про контамінації компонентів набору. |
| 3. У аналізованої пробі відсутність смуги строго на рівні |
| відповідного контролю свідчить про відсутність |
| збудника в пробі, наявність смуги, що відповідає за |
| електрофоретичної рухливості позитивного контролю, |
| свідчить про наявність хламідій у клінічній пробі. |
| 4. У всіх зразках виявляється смуга оранжево-червоного |
| кольору, що відповідає внутрішньому контролю розміром 308 |
| н.п. Отримані результати можна документувати |
| фотографуванням гелів з використанням помаранчевого або |
| інтерференційного (594 нм) світлофільтру. При використанні |
| відеосистеми "Gel-doc" можливо документування |
| результатів електрофорезу у вигляді комп'ютерного файлу, |
| доступного будь-яким додаткам "Windows". |
| Набір "Полімік" слід зберігати при температурі - 18-20 ° С |
| протягом усього терміну придатності (6 місяців). Допускається, |
| зберігання і транспортування набору при температурі не вище 0 |
| ° градусів не більше однієї доби. |
| За станом на третій квартал 1999 МОЗ Росії |
| крім набору "Полімік" дозволені наступні діагностичні |
| набори для виявлення хламідій трахоматіс методом ПЛР в |
| якості виробів медичного призначення: |
| набір реагентів ампліфікаціонний для визначення ДНК |
| хламідій (Хламідія-Амплі-тест) ТУ 9398-402-18137053-96 |
| виробництва АТ "ВНЦМДЛ", Москва; |
| набір реактивів для виявлення нуклеотидних |
| послідовностей хламидия трахоматіс методом ПЛР (Хлам |
| Ам) ТУ "9398-403-29032954-96 виробництва ЗАТ" Впровадження |
| систем в медицину ". Москва, |
| набір реагентів для виявлення ДНК хламідій трахоматіс |
| методом ПЛР (Хлам-Ген) ТУ 9398-412-46482062-97 виробництва |
| НПФ "ДНК-технологія", Москва. |
| |
| |
| Переваги і недоліки різних методів виявлення Chlamydia |
| trachomatis |
| (Taylor-Robinson О., Thomas BJ, 1991, з доповненнями Говорун В.М, |
| Бочкарьов Є.Г., Парфьонова Т.М., 1999) |
| |
| Характеристика/Метод |
| ПІФ |
| Культуральні посів |
| ІФА-методи |
| ПЛР |
| |
| Досліджуваний матеріал |
| Будь-який |
| Більшість |
| Обмеження через неспецифічної реакцій |
| Будь-який |
| |
| Значення правильно взятих проб |
| Вирішальне |
| Вирішальне |
| Вирішальне |
| Вирішальне |
| |
| Умови транспортування проб |
| Якщо препарат фіксований-умови не важливі |
| Швидка доставка чи зберігання при низькій температурі |
| Не має значення, якщо проба взята в буфер |
| Швидка доставка чи зберігання при низькій to менш важливо, ніж для |
| культури клітин |
| |
| Умови зберігання |
| На короткий час при +4 ° С тривало при -20 ° С |
| 4 ° С - добу-дві. Трив зберігання в рідкому азоті |
| 3 -5 днів при +4 ° С Заморожування знижує чутливість |
| На короткий час + 4 ° С, два тижні - 20 ° С Тривалий час - в |
| рідкому азоті |
| |
| Перевірка адекватності взяття матеріалу |
| Мазки оцінюють під час тестування |
| Не практикується |
| Не практикується |
| Визначається, чи присутній ДНК. |
| |
| Потреба в спеціальному обладнанні |
| Люмінесцентний мікроскоп |
| Центрифуга |
| Комплект для ІФА |
| Ампліфікатором й устаткування для електрофорезу |
| |
| Обробка проб |
| Проста |
| Трудомістке |
| Стає простіше для нових тестів |
| Вимагає суворої обережності, щоб не контаміновані ДНК |
| |
| Читання результатів |
| Суб'єктивне і стомливе |
| Суб'єктивне помірно стомлююче |
| Об'єктивне, Просте |
| Об'єктивне, просте |
| |
| Час виконання |
| 30 хвилин |
| 12-72 години |
| 3 години |
| 4,5-5 годин |
| |
| Способи перевірки результатів |
| Повторний перегляд |
| Повторний перегляд |
| Повторення тесту |
| Повторна проба або перетравлення ендоуклеазой |
| |
| Результат залежить від наступних причин: |
| Досвіду мікроскопісту |
| Чутливості клітинної культури |
| Властивій потужності тесту |
| Вимагає хорошого контролю та відсутністю контамінації |
| |
| Здатність до підтримки штаму |
| Ні |
| Да |
| Ні |
| Ні |
| |
| Використання як контролю ефективності лікування |
| Обмежено |
| Рекомендується |
| Обмежено |
| Рекомендується з обмеженнями |
| |
| |
| |