Про реакцію
прісноводної гідри на екзогенні біологічно активні (гормональні)
з'єднання b> p>
С.М.
Нікітіна, І.А. Ваколюк (Калінінградський державний університет) p>
Функціонування
гормонів як найважливіших регуляторів і інтеграторів метаболізму та
найрізноманітніших функцій в організмі неможливо без існування систем
специфічної рецепції сигналу і його трансформації в кінцевий корисний ефект,
тобто без гормонкомпетентной системи [1]. Іншими словами, наявність реакції на
організменном рівні на екзогенні з'єднання неможливе без наявності
ціторецепціі до цих сполук і відповідно без існування у цих
тварин ендогенних сполук, схожих на ті, якими ми впливаємо. Це
не суперечить концепції універсальних блоків [4, 5, 7, 11], коли основні
молекулярні структури у функціональних системах живих організмів
виявляються практично в повному наборі вже на самих ранніх етапах еволюції,
які тільки доступні вивченню, представлені обмеженим числом молекул і
здійснюють однойменні елементарні функції не тільки у представників одного
царства, наприклад в різних групах ссавців або навіть у різних типах, але й
у представників різних царств, в тому числі у багатоклітинних і
одноклітинних, у вищих еукаріотів та прокаріотів. p>
Однак
слід звернути увагу на те, що дані про склад і функції з'єднань,
виконують роль гормонів у хребетних тварин, у представників таксонів
досить низького філогенетичної рівня тільки починають з'являтися [7]. З
груп тварин філогенетичної низького рівня - гідра як представник
кишковопорожнинних є найбільш примітивним організмом, що володіє справжньою
нервовою системою. Нейрони розрізняються морфологічно, хімічно і, ймовірно,
функціонально. Кожен з них містить нейросекреторні гранули [2, 9, 12].
Встановлено значні розбіжності нейрональних фенотипів у гідри. У
гіпостоме є впорядковано розташовані групи з 6-11 синаптичних пов'язаних
клітин, які можна розглядати як доказ наявності в гідр
примітивних нервових гангліїв. Крім забезпечення поведінкових реакцій, нервова
система гідр виконує роль ендокринної регуляторної системи [8, 10],
забезпечуючи контроль метаболізму, розмноження, розвитку. У гідр існує
диференціювання нервових клітин за складом що містяться в них нейропептидів
[3]). Припускають [9, 10, 6], що молекули окситоцину, вазопресину, статевих
стероїдів і глюкокортикоїдів є універсальними. Вони знайдені і у
представників кишковопорожнинних. Головний і підошовний активатори (і
інгібітори) виділені з метанолові екстрактів тіла гідр. Головний активатор,
виділений з актиній, аналогічний по складу і властивостям нейропептид,
виявленому в гіпоталамусі і кишечнику корови, пацюки, свині, людини і в
крові останнього. Крім того, було показано, що і у безхребетних і у
хребетних [10] в забезпеченні реакції клітин на нейрогормони беруть участь
циклічні нуклеотиди, то є механізм дії цих речовин у двох
филогенетично різних лініях один. p>
Метою
даного дослідження, з огляду на вищевикладене, ми обрали вивчення комплексного
впливу на прісноводу гідру екзогенних біологічно активних (гормональних)
з'єднань. p>
Матеріал
і методи дослідження b> p>
Тварин
для експерименту збирали в червні-липні 1985-1992 рр.. на стаціонарі (протоки річки
Немонін, селище Матросовому Поліського району). Адаптація до вмісту в
лабораторних умовах - 10-14 діб. Обсяг матеріалу: тип - Coelenterata; клас
- Hydrozoa; вигляд - Hydra oligactis Pallas; кількість - 840. Кількість тварин
відображено на початку експерименту і не враховується приріст чисельності. p>
В
роботі були використані водорозчинні гормональні з'єднання окситоцинового
ряду, передньої частки гіпофіза з вихідною активністю в 1 мл (ип) (гіфотоцін --
5ЕД, пітуїтрин - 5ЕД, маммофізін - 3ЕД, префізон - 25ЕД, гонадотропін - 75ЕД) і
стероїд - преднізолон - 30 мг, які у хребетних забезпечують триланкового
ендокринну регуляцію, що включає гіпоталамо-гіпофізарний комплекс і
епітеліальні залози. p>
В
попередніх дослідах були використані концентрації препаратів від 0,00002 до
20 мл ип/л середовища утримання тварин. P>
Проводилося
три групи дослідження: p>
1-а
- Визначення "+" або "-" реакції у всіх прийнятих нами
концентраціях; p>
2-а
- Визначення діапазону концентрацій, що забезпечують роботу в хронічному
режимі різної тривалості; p>
3-я
- Хронічний експеримент. P>
В
експерименті враховувалася активність брунькування гідри. Отримані дані
піддавалися стандартної статистичної обробки. p>
Результати
досліджень p>
При
визначенні "±" реакції гідр в широкому діапазоні
концентрацій сполук були відібрані три (0,1 мл ип/л середовища, 0,02 мл ип/л
середовища та 0,004 мл ип/л середовища). p>
В
контрольній групі гідр протягом п'яти діб брунькування залишалося на рівні
0,0 - 0,4 нирки/гідру (Ра). У середовищі мінімальної концентрації префізона приріст
був 2,2 особи/гідру, пітуїтрин - 1,9 особи/гідру (достовірність відмінностей з
контролем украй висока - з рівнем значимості 0,01). У середніх концентраціях
добре себе проявили гіфотоцін, маммофізін і префізон (1,8-1,9 особин/гідру).
Преднізолон в мінімальної, і особливо в середній концентрації, викликав приріст
чисельності 1,1-1,3 особи/гідру, що значно перевищує контроль. p>
В
наступному експерименті використані тільки оптимальні концентрації
гормональних сполук. Тривалість експерименту - 9 діб. На початок
досвіду за значенням Ра контрольна і експериментальна групи достовірно не
помітні. Через дев'ять діб експерименту значення Ра достовірно відрізнялося в
дослідних групах і контролі з рівнем значимості 0,05 (табл. 1). p>
Таблиця
1 p>
Вплив
гормональних препаратів на брунькування гідри (Ра) і ймовірність достовірності їх відмінностей (р) p>
середу p>
Ра p>
Зміна p>
р p>
1 добу p>
9 добу p>
Ра p>
1 добу p>
9 добу p>
Контроль p>
1,2 ± 0,8 p>
1,5 ± 0,9 p>
0,3 ± 0,1 p>
- p>
- p>
гонадотропін p>
2,1 ± 1,2 p>
5,1 ± 0,3 p>
3,0 ± 0,8 p>
0,71 p>
0,95 p>
Префізон p>
1,1 ± 0,7 p>
4,9 ± 2,0 p>
3,8 ± 1,3 p>
0,13 p>
0,97 p>
Гіфотоцін p>
1,8 ± 0,8 p>
6,1 ± 2,2 p>
4,3 ± 1,4 p>
0,58 p>
0,99 p>
пітуїтрин p>
0,8 ± 0,5 p>
4,5 ± 2,0 p>
3,7 ± 1,5 p>
0,47 p>
0,98 p>
Маммофізін p>
1,1 ± 0,3 p>
5,3 ± 2,0 p>
4,2 ± 1,7 p>
0,15 p>
0,99 p>
Преднізолон p>
1,5 ± 0,4 p>
7,1 ± 2,2 p>
5,6 ± 1,8 p>
0,43 p>
0,99 p>
Як
видно з таблиці, найбільше значення Ра отримано при утриманні тварин в
преднізолон. Всі пептидні препарати дають приблизно схожі значення Ра
(в середньому 3,8 ± 0,5). Однак і тут є розкид. Найкращий ефект (4,3 ± 1,4)
досягається при утриманні тварин в середовищі з очищеною екстрактом
нейрогіпофіза - гіфотоціном. Близький до нього за ступенем впливу маммофізін. У
експериментальних групах з пітуїтрин і префізоном значення величини Ра рівні
3,7 ± 1,5 і 3,8 ± 1,3 відповідно. Найменший ефект дає вплив на гідр
гонадотропіном. Недостовірні відмінності в Ра виникають під кінець першої доби
після приміщення гідр в розчини гормональних препаратів. Протягом дев'яти
доби експерименту Ра в контролі не змінюється. Починаючи з третьої доби Ра під
всіх експериментальних групах істотно перевищує Ра у контролі. Слід
відзначити поступове достовірне збільшення цього показника у
експериментальних груп до дев'ятого добі. p>
Для
оцінки статистичної достовірності надаються впливів порівнювалися
значення критерію F (відношення середніх квадратів), отримані для кожного з
двох факторів окремо (А - фактор тривалості змісту; В - фактор
впливу) і для їх взаємодії (А + В), і табличні значення критерію для
двох рівнів значущості Р = 0,05 і Р = 0,01 (табл. 2). p>
Таблиця
2 p>
Результати
дисперсійного аналізу впливу гормональних препаратів та тривалості утримання на інтенсивність
безстатевого розмноження Hydra oligactis p>
Фак- p>
Фактичне в групах p>
Таблічое Р p>
тори p>
пітуїтрин p>
Маммофізін p>
Гіфотоцін p>
гонадотропін p>
Префізон p>
Преднізолон p>
0,05 p>
0,01 p>
А p>
3,44 p>
1,40 p>
2,27 p>
2,17 p>
3,62 p>
1,30 p>
1,92 p>
2,50 p>
В p>
8,37 p>
4,04 p>
8,09 p>
4,73 p>
8,26 p>
12,70 p>
4,00 p>
7,08 p>
А + В p>
1,12 p>
0,96 p>
0,56 p>
0,37 p>
1,07 p>
1,03 p>
1,92 p>
2,50 p>
Як
видно з таблиці, Fфакт для фактора впливу при рівні значущості 0,05 у
всіх експериментальних групах більше Fтабл, а при рівні значущості 0,01 така
картина спостерігається в групах з пітуїтрин, гіфотоціном, префізоном і преднізолоном,
причому ступінь впливу в групі з преднізолоном найвища, набагато
більше, ніж у групах з пітуїтрин, гіфотоціном і префізоном, що мають схожу
силу впливу (значення Fфакт дуже близькі). Вплив взаємодії факторів
А і В у всіх експериментальних групах не є доведеним. P>
Для
фактора А Fфакт менше Fтабл (при обох рівнях значимості) в групах з
маммофізіном і преднізолоном. У групах з гіфотоціном і гонадотропіном Fфакт
більше Fтабл при Р = 0,05, тобто вплив цього фактора не може вважатися
остаточно доведеним, на відміну від експериментальних груп з пітуїтрин і
префізоном, де Fфакт більше Fтабл і при Р = 0,01 і при Р = 0,05. p>
Всі
гормональні препарати, крім гонадотропіну, в тій чи іншій мірі затримують
початок безстатевого розмноження. Однак статистично достовірним це виявляється
тільки в групі з префізоном (Р = 0,01). Використані в експерименті
гормональні препарати достовірно не впливають на тривалість розвитку
єдиної нирки, змінюють взаємний вплив першого і другого нирок: пітуїтрин,
маммофізін, префізон, гонадотропін - при наявності тільки сформованого
головного відділу розвиваються нирок; пітуїтрин, гонадотропін і преднізолон --
за наявності хоча б одного сформованого підошовного відділу, що розвиваються
нирок. p>
Таким
чином, можна вважати встановленою чутливість гідр до широкого спектру
гормональних сполук хребетних і припустити, що екзогенні гормональні
з'єднання включаються (як синергіст або антагоністи) в ендокринний регуляторний
цикл, властивий самої гідрі. p>
Список
літератури b> p>
1.
Перцева М.Н. Міжмолекулярні основи розвитку гормонкомпетентності. Л.: Наука,
1989. P>
2.
Богута К.К. Деякі морфологічні принципи формування нізкоорганізованних
нервових систем в онто-і філогенезі// Успіхи сучасної біології. М.: Наука,
1986. Т. 101. Вип. 3. P>
3.
Іванова-Казас А.А. Безстатеве розмноження тварин. Л., 1971. P>
4.
Спадщина Г.А. Багатовариантність здійснення елементарних функціональних завдань
і спрощення системи молекулярних взаємодій як закономірність
функціональної еволюції// Журнал еволюційної біохімії та фізіології. 1991. Т. 27.
№ 5. P>
5.
Наточин Ю.В., Бройнліх Х. Використання методів токсикології у вивченні
проблеми еволюції функцій нирки// Журнал еволюційної біохімії та фізіології.
1991. Т. 27. № 5. P>
6.
Нікітіна С.М. Стероїдні гомони у безхребетних тварин: Монографія. Л.:
Изд-во ЛГУ, 1987. P>
7.
Афонькін С.Ю. Міжклітинний самораспознованіе у найпростіших// Итоги науки і
техніки. М., 1991. Т. 9. P>
8.
Проссер Л. Порівняльна фізіологія тварин. М.: Світ, 1977. Т. 3. P>
9.
Резніков К.Ю., Назаревский Г.Д. Стратегія розвитку нервової системи в онто-і
філогенезі. Гідра// Успіхи сучасної біології. М.: Наука, 1988. Т. 106.
Вип.2 (5). P>
10.
Шейман І.М., Балобанова Е.Ф., Пептидні гормони безхребетних// Успехи
сучасної біології. М.: Наука, 1986. Т. 101. Вип. 2. P>
11.
Етінгоф Р.Н. Вивчення молекулярної структури нейрорецепторов. Методичні
підходи, еволюційні аспекти// Журнал еволюційної біохімії та фізіології.
1991. Т. 27. № 5. P>
12. Highnam K.C., Hill L. The
comparative Endocrinology of the Invertebrates// Edward Arnold, 1977. p>
Для
підготовки даної роботи були використані матеріали з сайту http://elib.albertina.ru
p>